SARS-CoV-2-antistoffer kan måles i blodprøve, men har begrænset værdi og anvendes ikke rutinemæssigt i Danmark.
Antistof-testene har tidligere været brugt epidemiologisk overvågning af antallet af personer, der har været smittet, ved at man gennem regelmæssige testninger har fulgt serokonverteringen i en udvalgt del af befolkningen.1
Som figuren herunder illustrerer, kan en antistoftest afsløre tidligere infektion.
Fortolkninger
Som det fremgår af baggrundsafsnittet, kræver tolkningen af antistofsvar, at disse sammenholdes med patientens klinik, sygehistorie og resultatet af PCR testen
Afhængigt af den specifikke test kan antistoffer også ses efter vaccination for COVID-19.
Sammenhæng mellem SARS-CoV-2 test og virusmængde og positiv test
Fejlkilder (og kilder til normal variation)
Den hyppigste fejl er forkert timing i forhold til smittetidspunktet
Interferens fra heterofile antistoffer kan forekomme
Fysiologi og biokemi
Infektion med coronavirus: Severe acute respiratory syndrome coronavirus 2 (SARS-CoV-2) giver sygdommen “Coronavirus disease 2019 (COVID-19)
Coronavira inficerer både dyr og mennesker, hvor de i varierende omfang forårsager sygdom
Inkubationstiden for COVID-19 er mellem 1 og 14 dage med en mediantid omkring 5-6 dage
En betydelig del af person-til-person transmission af SARS-CoV-2 virus kan ske, før den inficerede selv udvikler symptomer (præsymptomatisk transmission)2
En lille del af de personer, der er inficeret med SARS-CoV-2, udvikler aldrig symptomer, men kan stadig smitte andre og dermed bidrage til spredning af sygdommen 3
Forekomsten af asymptomatiske tilfælde kan variere i forskellige aldersgrupper og afhængigt af smittespredningen i samfundet
Normalt tager det op til 2 uger at komme sig over en mild SARS-CoV-2 infektion, mens det kan tage op til 6 uger i de alvorligere tilfælde
I de mest alvorlige tilfælde er tid fra de første symptomer til død mellem 2 og 8 uger
Anvendes på hospitaler til diagnostik af aktiv SARS-C
Antistoftest anvendes ikke rutinemæssigt. Kan kun være et supplement til PCR
Prøvetagning
Kan udføres på veneblodprøve, dog er analysen/analyserne ikke udbredt i Danmark
Kapillærprøve
Referenceintervaller
SARS-CoV-2-Ab
Negativ: Der er ikke påvist antistoffer mod SARS-CoV-2
Gråzone: Der er ikke sikkert påvist antistoffer mod SARS-CoV-2. Prøven bør gentages for at følge udviklingen i antistofresponset
Positiv: Der er påvist antistoffer mod SARS-CoV-2
NPU
Der findes mange antistoftests og derfor tilsvarende mange NPU numre (IgM, IgG, IgA antistoffer mod hhv. Spike glycoprotein og Nucleoprotein, kombinationer af antistoffer, neutraliserende antistoffer). Den samlede liste udelades i denne artikel.
Initialt øges IgM efterfulgt af IgG og IgA antistoffer (se figur som der linkes til nedenfor)
Serokonverteringen, dvs. det tidspunkt, hvor der er målbare niveauer af antistoffer mod SARS-CoV-2, indtræder ved COVID-19 ofte dage efter, at mængden af virus har toppet5
Derfor kan serologiske tests ikke erstatte NAAT i den helt tidlige fase af en SARS-CoV-2 infektion, således var:
kun ca. 30 % serokonverteret en uge efter symptomdebut
Den klassiske opfattelse har været, at IgM antistoffer er til stede før IgG antistofferne, og at skiftet i antistof isotyper sker sekventielt7 - og det således er muligt at bruge tilstedeværelsen/mængden af de forskellige isotyper til at skelne akut fra overstået infektion.
Men studier har vist, at der er en betydelig variation i antistofresponset mod SARS-CoV-2.8
Hos de fleste kan SARS-CoV-2 IgM måles før SARS-CoV-2 IgG antistofferne
Hos nogle fremkommer IgM og IgG stort set samtidigt, og hos andre synes IgG at være til stede før IgM
Samlet synes måling af antistoffer derfor primært at kunne bruges til at fastlægge, i hvilket omfang en patient har produceret de forskellige isotyper af antistoffer, mens det er sværere at bruge antistofmåling til at fastlægge et evt. tidspunkt for infektion med SARS-CoV-2
Det, der adskiller de tidlige antistof respons fra de senere, er antistoffernes aviditet; Dvs. evnen til at danne polymerer, der øger antigen-antistofinteraktionen
Desværre findes der endnu ikke automatiserede assays til at bestemme dette for SARS-CoV-2, men ofte vil det indirekte vise sig ved en stigende titer umiddelbart efter vaccination/infektion
Forskelle i måling af antistoffer
Der er forskellige analyser til måling af SARS-CoV-2 antistoffer. Hvis analysen ønskes udført kontakt lokale laboratorium for at få nærmere oplysninger
Typer af Sars-CoV-2 antistoffer
Foruden forskelle i antistof isotyper der bestemmes, er der også forskelle i, hvilken del af virus de antistoffer, der måles, er rettet i mod.
Spikeprotein antistoffer.
De fleste er rettet mod spike-proteinet, som er det protein SARS-CoV-2 bruger til at binde sig til ACE2-receptoren for at komme ind i kroppens celler.
Andre er rettet mod nukleocapsid proteinet. mRNA vaccinerne indeholder ikke sekvenser, der koder for Nucleoprotein
Der synes dog ikke at være den store forskel i, hvornår der fremkommer antistoffer mod de forskellige proteiner
Derfor kræver tolkningen af antistofsvar, at disse sammenholdes med patientens sygehistorie, klinik og resultaterne af PCR-testen.
Hvordan måles antistoftest for COVID-19; Coronavirus SARS-CoV-2 Ab?
Der er to typer af antistoftest for SARS-CoV-2 (nCOV-19).
ELISA-testen udført på almindelige blodprøveglas
Hurtigtest (anvendes ikke på hospitaler)
ELISA-testen
ELISA (forkortelse fra engelsk enzyme-linked immunosorbent assay) er en metode til præcist at bestemme små koncentrationer af antigener eller antistoffer. ELISA-testen er mere præcis end en hurtigtest, og svaret viser, hvor mange antistoffer du har dannet
Der findes en international standard for Spikeprotein antistof-titeren. Spikeprotein antistof-titeren siger noget om grad immunitet. Men desværre er det på grund af variationer i proteinsekvensen mellem de spikeproteiner, der findes i de virusstammer, der cirkulerer på et givet tidspunkt og de, der anvendes i de standardiserede analyser, ikke muligt at fastlægge en præcis grænse for, hvornår man er immun
West R, Kobokovich A, Connell N, Gronvall GK. COVID-19 Antibody Tests: A Valuable Public Health Tool with Limited Relevance to Individuals. Trends Microbiol. 2021; 29.; 214-223.
PubMed
He X, Lau EHY, Wu P, Deng X, Wang J, Hao X, Lau YC, Wong JY, Guan Y, Tan X, Mo X, Chen Y, Liao B, Chen W, Hu F, Zhang Q, Zhong M, Wu Y, Zhao L, Zhang F, Cowling BJ, Li F, Leung GM. Temporal dynamics in viral shedding and transmissibility of COVID-19. Nat Med. 2020; 26.; 672-675.
PubMed
Li R, Pei S, Chen B, Song Y, Zhang T, Yang W, Shaman J. Substantial undocumented infection facilitates the rapid dissemination of novel coronavirus (SARS-CoV-2). Science. 2020; 368.; 489-493.
PubMed
To KK, Tsang OT, Leung WS, Tam AR, Wu TC, Lung DC, Yip CC, Cai JP, Chan JM, Chik TS, Lau DP, Choi CY, Chen LL, Chan WM, Chan KH, Ip JD, Ng AC, Poon RW, Luo CT, Cheng VC, Chan JF, Hung IF, Chen Z, Chen H, Yuen KY. Temporal profiles of viral load in posterior oropharyngeal saliva samples and serum antibody responses during infection by SARS-CoV-2: an observational cohort study. Lancet Infect Dis. 2020; 20.; 565-574.
PubMed
Wölfel R, Corman VM, Guggemos W, Seilmaier M, Zange S, Müller MA, Niemeyer D, Jones TC, Vollmar P, Rothe C, Hoelscher M, Bleicker T, Brünink S, Schneider J, Ehmann R, Zwirglmaier K, Drosten C, Wendtner C. Virological assessment of hospitalized patients with COVID-2019. Nature. 2020; 581.; 465-469.
PubMed
Deeks JJ, Dinnes J, Takwoingi Y, Davenport C, Spijker R, Taylor-Phillips S, Adriano A, Beese S, Dretzke J, Ferrante di Ruffano L, Harris IM, Price MJ, Dittrich S, Emperador D, Hooft L, Leeflang MM, Van den Bruel A, Cochrane COVID-19 Diagnostic Test Accuracy Group.. Antibody tests for identification of current and past infection with SARS-CoV-2. Cochrane Database Syst Rev. 2020; 6.; CD013652.
PubMed
Bauer G. The variability of the serological response to SARS corona virus-2: Potential resolution of ambiguity through determination of avidity (functional affinity). J Med Virol. 2020..
PubMed
Mink S, Fraunberger P. Anti-SARS-CoV-2 Antibody Testing: Role and Indications. J Clin Med. 2023; 12..
PubMed
Haveri A, Smura T, Kuivanen S, Österlund P, Hepojoki J, Ikonen N, Pitkäpaasi M, Blomqvist S, Rönkkö E, Kantele A, Strandin T, Kallio-Kokko H, Mannonen L, Lappalainen M, Broas M, Jiang M, Siira L, Salminen M, Puumalainen T, Sane J, Melin M, Vapalahti O, Savolainen-Kopra C. Serological and molecular findings during SARS-CoV-2 infection: the first case study in Finland, January to February 2020. Euro Surveill. 2020; 25..
PubMed
Fagmedarbejdere
Nete Hornung
Cheflæge, Klinisk biokemisk afdeling, Hospitalsenheden Vest
Dorte Bojer
Alm. prakt. læge, Grenå
Har du en kommentar til artiklen?
Bemærk venligst, at du IKKE vil modtage svar på henvendelser, der omhandler din egen sygdom, pårørendes sygdom, blodprøvesvar, hjælp til at udarbejde skoleopgaver og litteratursøgning.